Иммунитет КРС: особенности и методы его контроля

Здоровье всего стада во многом зависит от того, насколько сильны защитные силы организма животных и насколько хорошо мы их контролируем.

Сегодня для контроля иммунитета доступны как простые методы, которые можно использовать прямо на ферме, так и лабораторные исследования, позволяющие получить более точную информацию. Но прежде чем говорить о методах диагностики, важно понять несколько особенностей иммунной системы крупного рогатого скота.

Особенности иммунной системы крупного рогатого скота

У КРС есть несколько важных физиологических особенностей, которые необходимо учитывать при организации ветеринарно-профилактических мероприятий.

• У коров синдэсмохориальный тип плаценты. Он практически полностью блокирует переход материнских антител к плоду. Поэтому телята рождаются почти без собственной защиты — их называют агаммаглобулинемичными — и в первые часы жизни очень уязвимы перед инфекциями. [4, 5]
• Главный источник защиты для новорождённого телёнка — молозиво. Именно из него он получает первые антитела. От качества молозива, его количества и того, насколько быстро его выпоили (лучше всего в первые 1–2 часа), зависит выживаемость телёнка и его дальнейшее здоровье. [4]
• Когда уровень материнских антител начинает снижаться, наступает так называемое «окно иммунной уязвимости». В этот период защита, полученная с молозивом, уже ослабевает, а собственный иммунитет телёнка ещё не успел полностью сформироваться. Именно тогда молодняк наиболее подвержен заболеваниям. [4, 5]
• На иммунитет сильно влияют стрессы: перегруппировки, перевозки, резкая смена корма, плохая вентиляция или слишком плотное содержание животных. Такие факторы могут временно ослаблять защитные силы организма и повышать риск болезней. [2]

Когда стоит проверять иммунитет

Плановый контроль иммунитета помогает выявлять проблемы ещё до появления клинических признаков заболеваний. Однако в некоторых ситуациях проведение исследований особенно важно:

• при повышенной заболеваемости телят;
• после изменения схемы выпойки молозива;
• после смены поставщика заменителя молозива;
• при пересмотре программы вакцинации;
• после завоза новых животных в хозяйство;
• при подозрении на снижение эффективности вакцинации.

Своевременная оценка иммунного статуса позволяет выявить возможные нарушения передачи колострального иммунитета, оценить эффективность профилактических мероприятий и принять необходимые меры до того, как проблема приведёт к экономическим потерям.

Современные методы контроля иммунитета

Чтобы понимать, как обстоят дела с иммунитетом в стаде, используют два основных типа методов: полевые (экспресс) и лабораторные. Лучше всего они работают в связке.

1. Полевые методы предназначены для быстрой оценки иммунного статуса непосредственно на ферме и часто используются для оценки колострального иммунитета. Они просты в исполнении, не требуют сложного оборудования и дают результат в течение нескольких минут.

Brix-рефрактометрия и определение общего белка сыворотки (STP)

Оба метода работают по одному принципу — измеряют, насколько сильно преломляется свет в молозиве или сыворотке крови. Чем больше в жидкости белков и иммуноглобулинов, тем выше показатель.

Данные методы применяют для :

• оценки качества молозива у коров;
• оценки колостральных антител у телёнка после выпойки молозива (оптимально в 24–48 часов жизни).

В первые дни жизни телёнка основную долю общего белка сыворотки составляют иммуноглобулины G (IgG), полученные с молозивом, поэтому данные методы служат надёжным косвенным маркером качества пассивного иммунитета.

Преимущества полевых методов:

✓ Быстрый результат (10–60 секунд);

✓ Простота использования;

✓ Низкая стоимость анализа;

✓ Один прибор (Brix-рефрактометр) используется и для молозива, и для сыворотки;

✓ Удобно для массовой проверки телят

Недостатки:

✕ Метод косвенный — измеряет все белки, а не только антитела;

✕ На результат влияют обезвоживание, гемолиз или качество пробы (жирность);

✕ Не определяет специфические антитела.

Ниже приведены основные пороговые значения, которые используются для оценки качества молозива и контроля передачи пассивного иммунитета у телят.

2. Лабораторные исследования используют, когда нужна более точная оценка иммунитета или контроль антител к определённым заболеваниям. В современной ветеринарной практике основной акцент делается на серологические методы, и прежде всего — на иммуноферментный анализ (ИФА).

ИФА помогает определить:

• Насколько хорошо сработала вакцинация;
• Уровень антител к конкретным болезням (ВД, ИРТ, РСИ, пастереллёз и др.);
• Качество колострального иммунитета;
• Общую инфекционную обстановку в стаде (в том числе по сборному молоку)

Плюсы ИФА:

✓ Высокая точность и чувствительность;

✓ Можно исследовать большую выборку одновременно;

✓ Относительно быстрая выдача результатов (несколько часов);

✓ Доступен в большинстве ветеринарных лабораторий.

Минусы:

✕ Нужно отправлять пробы в лабораторию;

✕ Стоит дороже полевых методов;

✕ Наличие антител не всегда означает полную защиту животного (метод не учитывает клеточный иммунитет)

3. Другие лабораторные серологические методы используются реже (чаще в государственных лабораториях). Самые известные из них:

• РИД (радиальная иммунодиффузия) — используется для диагностики лейкоза КРС и бруцеллёза;
• РСК (реакция связывания комплемента) — используется в диагностике бруцеллёза и хламидиоза;
• РМА (реакция микроагглютинации, MAT) — остаётся важным методом для диагностики лептоспироза.

Заключение

Контроль иммунитета — это важный инструмент управления здоровьем стада.

Если грамотно сочетать простые экспресс-методы на ферме с лабораторными анализами, можно вовремя заметить проблемы с молозивом или вакцинацией, снизить заболеваемость телят и сохранить здоровье стада.

В следующей статье мы детально разберём, как формируется колостральный иммунитет у телят, какие методы его контроля существуют и какие практические рекомендации помогают существенно снизить заболеваемость молодняка.

Источники:

1. Behling-Kelly E.L., Westhoff T.A., Mann S. Comparison of radial immunodiffusion, turbidimetric immunoassay, and Brix refractometry for determining bovine colostrum quality. JDS Communications. 2024;5(6):679-683. DOI: 10.3168/jdsc.2024-0604
2. Buczinski S., Gicquel E., Fecteau G. et al. Systematic Review and Meta-analysis of Diagnostic Accuracy of Serum Refractometry and Brix Refractometry for the Diagnosis of Inadequate Transfer of Passive Immunity in Calves. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2018;32(1):474–483.
3. Chase C.C.L., Hurley D.J., Reber A.J. Neonatal Immune Development in the Calf and Its Impact on Vaccine Response. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2008;24(1):87–104.
4. Dairy Calf & Heifer Association (DCHA). Gold Standards II: Passive Transfer Evaluation Guidelines. 2021.
5. Godden S.M. Colostrum Management for Dairy Calves. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2008;24(1):19–39.
6. Godden S.M., Lombard J.E., Woolums A.R. Colostrum Management for Dairy Calves. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2019;35(3):535–556.
7. Hernandez D., Nydam D.V., Godden S.M. et al. Brix Refractometry in Serum as a Measure of Failure of Passive Transfer in Dairy Calves. The Veterinary Journal. 2016;211:82–87.
8. Townsend J. Calf curriculum cum laude [вебинар Dairy Calf and Heifer Association]. Hoard's Dairyman Intel. 2025 Dec 29.
9. Phipps A.J., Beggs D.S., Murray A.J. et al. A Scoping Review of On-Farm Colostrum Management Practices for Optimal Transfer of Immunity in Dairy Calves. Animals. 2021;11(6):1691.