Аборты у КРС: причины, диагностика и методы профилактики
В предыдущей статье мы разобрали, какой уровень абортов считается нормой и какие факторы повышают риск их возникновения. Теперь поговорим о том, почему происходят аборты у коров, какие современные методы помогают установить их причину и какие меры позволяют снизить репродуктивные потери в хозяйстве.
Причины абортов условно разделяют на две большие группы:
На практике именно инфекционные заболевания чаще всего становятся причиной массовых абортов, тогда как неинфекционные факторы обычно вызывают единичные случаи. По данным систематического обзора Hecker и соавт. (2023), инфекционные агенты выявляются почти в половине исследованных случаев абортов у КРС. [10]
Инфекционные причины абортов
По данным крупнейшего систематического обзора и метаанализа, охватившего мировые исследования за 2000–2022 гг., наиболее значимыми инфекционными причинами абортов у КРС являются Neospora caninum, условно-патогенные (оппортунистические) бактерии, представители семейства Chlamydiaceae, Coxiella burnetii, вирус инфекционного ринотрахеита и вирусная диарея КРС.
Однако данный список не исчерпывает всех возможных причин абортов. На практике важно не просто знать основных возбудителей, а понимать, какие особенности позволяют заподозрить ту или иную инфекцию уже при первых случаях потери стельности. Рассмотрим наиболее распространённые из них.
1. Неоспороз (Neospora caninum)
Если одна и та же корова абортирует несколько раз в течение жизни, а затем аналогичная проблема возникает у её потомства, стоит в первую очередь заподозрить неоспороз.
Главная особенность Neospora caninum заключается в том, что паразит активно (и успешно) передаётся от матери плоду ещё во время стельности. Именно вертикальная (трансплацентарная) передача считается основным механизмом сохранения инфекции в стаде.
Чаще всего аборты регистрируются во втором триместре стельности, преимущественно между 5-м и 7-м месяцем. При этом клинические признаки у коров, как правило, отсутствуют, а инфицированные телята рождаются без видимых признаков болезни и в дальнейшем остаются носителями инфекции. [12]
После подтверждения неоспороза важно оценить уровень серопозитивности животных в стаде — это помогает понять, насколько широко инфекция распространена в хозяйстве и требуется ли пересмотр стратегии воспроизводства. Для этого удобно использовать ИФА анализ.
2. Вирусная диарея крупного рогатого скота (BVD)
Главная опасность вирусной диареи КРС связана не столько с абортами, сколько с появлением персистентно инфицированных (ПИ) животных.
Если плод заражается примерно на 40–125 день стельности, его иммунная система начинает воспринимать вирус как «свой». В результате рождается ПИ-телёнок — основной источник инфекции в стаде. [14]
Последствия заражения зависят от срока беременности и могут включать раннюю эмбриональную смертность, аборты, врождённые аномалии развития и рождение ослабленных телят. Поэтому борьба с BVD строится не только на вакцинации, но и на регулярном поиске и выбраковке ПИ-животных.
Для контроля инфекции важно проводить серологический мониторинг стада, а молодняк обследовать на наличие ПИ-животных с помощью ПЦР или антиген-тестов (ИФА). Именно такой системный подход позволяет разорвать цикл циркуляции вируса в хозяйстве.
Более подробно про Вирусную диарею можете прочитать в статье.
3. Инфекционный ринотрахеит КРС (ИРТ, IBR, BoHV-1)
Особенность герпесвируса BoHV-1 заключается в том, что после заражения он остаётся в организме животного на всю жизнь (вирус сохраняется в нервных ганглиях). Большую часть времени инфекция никак себя не проявляет, однако транспортировка, перегруппировка животных, отёл или другие стрессовые факторы могут привести к реактивации вируса. [15]
В результате внешне здоровая корова начинает выделять возбудителя и становится источником заражения для других животных.
Репродуктивные нарушения при ИРТ проявляются эмбриональной смертностью, абортами и рождением нежизнеспособных телят. Аборты обычно возникают спустя несколько недель после инфицирования и чаще наблюдаются после четвёртого месяца стельности.
Для контроля инфекции важно не только расследовать отдельные случаи абортов, но и регулярно проводить серологический мониторинг стада. Это позволяет своевременно выявлять циркуляцию вируса и корректировать программы вакцинации.
4. Лептоспироз (Leptospira spp)
Инфекция часто протекает скрыто: животное может выглядеть абсолютно здоровым, но при этом выделять возбудителя с мочой и заражать окружающих. Особенно часто лептоспироз выявляют в хозяйствах, где животные имеют доступ к естественным водоёмам, заболоченным пастбищам или местам скопления грызунов. [1]
Аборты чаще наблюдаются во второй половине беременности и могут носить как спорадический, так и вспышечный характер. Нередко им предшествуют лихорадка и кратковременное ухудшение общего состояния животных, однако клинические признаки могут быть скрытыми.
Важной особенностью лептоспироза является возможность формирования хронического носительства. Инфицированные животные могут длительно сохранять возбудителя в почках и репродуктивном тракте и выделять его во внешнюю среду даже при отсутствии клинических признаков заболевания. При этом серологические исследования не всегда позволяют выявить таких животных, поэтому для подтверждения носительства всё чаще используют ПЦР-диагностику. [8]
5. Листериоз (Listeria monocytogenes)
Для листериоза наиболее характерна связь с кормовым фактором. Основным источником заражения листериоза считается некачественный силос с высоким pH (обычно > 5,0), в котором Listeria monocytogenes активно размножается. Поэтому вспышки листериозных абортов нередко возникают после начала скармливания новой партии силоса или при нарушении технологии его заготовки.
У стельных коров листерии вызывают бактериемию с последующим инфицированием плаценты и плода. Аборты чаще происходят во второй половине стельности, обычно без предшествующих клинических признаков у матери. В отдельных случаях могут наблюдаться септицемия, угнетение или неврологические симптомы, однако чаще единственным проявлением заболевания остаётся потеря плода. [13]
В диагностике листериозного аборта важен комплексный подход: гистология плаценты с выявлением некротического плацентита, а также лабораторное подтверждение инфекции (бактериология + ПЦР). Существенное значение имеет анализ кормовой базы, особенно оценка качества силоса как возможного источника инфекции.
Неинфекционные причины абортов
При тепловом стрессе животные хуже поедают корм, нарушается гормональная регуляция, снижается качество ооцитов и ухудшается работа матки. Всё это повышает риск ранней гибели эмбриона и последующих абортов, особенно у высокопродуктивных коров. [4, 9]
2. Ошибки кормления и метаболические нарушения
Недостаток энергии, белка, витаминов и микроэлементов приводит к гормональным сбоям и ухудшает условия для развития эмбриона. [14]
Отдельную проблему представляют некачественные корма и микотоксины, которые могут напрямую повреждать эмбрион и вызывать его гибель на разных стадиях беременности. [2]
Если в хозяйстве наблюдается череда необъяснимых абортов, важно проанализировать и кормовую базу наряду с поиском инфекционных агентов.
При близкородственном разведении (инбридинге) снижается общая жизнеспособность потомства. Это проявляется в уменьшении фертильности и повышении риска ранней эмбриональной смертности. [3, 5]
4. Многоплодная беременность и стресс
Двойни у коров часто сопровождаются осложнениями и повышенным риском потери беременности. Дополнительно ситуацию ухудшают стрессовые факторы — транспортировка, перегруппировка, изменение условий содержания. Стресс влияет на гормональный баланс и может приводить к прерыванию беременности, особенно при сочетании с другими неблагоприятными условиями. [6, 11]
Диагностика абортов
Установить истинную причину аборта удаётся далеко не всегда. Одна из самых распространённых ошибок на практике — ограничиться регистрацией случая и утилизацией плода без проведения лабораторных исследований. В результате хозяйство теряет возможность понять, что именно привело к потере стельности, а значит — предотвратить повторение подобных случаев в будущем.
Чтобы повысить вероятность постановки диагноза, важно как можно быстрее после аборта отобрать и направить в лабораторию необходимый материал.
Для исследования рекомендуется сохранять:
- органы плода (печень, лёгкие, почки, селезёнку, головной мозг);
- плаценту и плодные оболочки;
- кровь или сыворотку крови матери.
Важно помнить, что качество и своевременность отбора проб имеют решающее значение: чем меньше времени прошло с момента аборта, тем выше вероятность выявить его истинную причину.
Сегодня одним из основных инструментов диагностики является ПЦР-анализ, который позволяет обнаруживать ДНК или РНК сразу нескольких возбудителей даже при небольшом количестве биоматериала.
Дополнительным преимуществом метода является возможность использования образцов, нанесённых на FTA-карты, что существенно упрощает хранение и транспортировку материала, особенно для удалённых хозяйств.
Однако ни один лабораторный метод не является универсальным. Наиболее надёжные результаты обеспечивает комплексный подход, сочетающий ПЦР-диагностику, серологические исследования, бактериологический посев, а при необходимости — гистологическое исследование тканей плода и плаценты.
Не менее важно помнить, что аборты не всегда имеют инфекционную природу. Если лабораторные исследования не выявляют возбудителя или случаи повторяются, необходимо дополнительно оценить качество кормов (в том числе наличие микотоксинов, нитратов и нитритов), витаминно-минеральный состав, а также сбалансированность рационов и условия содержания.
Практика показывает, что только комплексный подход позволяет установить наиболее вероятную причину аборта и своевременно принять меры для предотвращения новых репродуктивных потерь.
Чтобы лучше понимать, как на практике проводится поиск причин абортов, рассмотрим реальный диагностический случай. Он наглядно показывает, почему для постановки диагноза важно проводить оценку проблемы комплексно, используя разные методы диагностики.
В одном из молочных хозяйств за короткий период было зарегистрировано несколько случаев абортов во втором триместре стельности. Первое ПЦР-исследование материала от абортировавших животных выявило Mycoplasma bovis практически во всех образцах, поэтому именно этот возбудитель сначала рассматривался как наиболее вероятная причина проблемы.
Однако дальнейшее обследование хозяйства заставило пересмотреть первоначальную версию. При ИФА-диагностике у большинства абортировавших коров был обнаружен высокий уровень антител к Neospora caninum, а анализ истории воспроизводства выявил повторные случаи потери стельности. Дополнительно выяснилось, что на территории хозяйства постоянно содержатся сторожевые собаки, имеющие доступ к производственной зоне и местам хранения кормам, что создаёт условия для циркуляции возбудителя.
В итоге Mycoplasma bovis была расценена как сопутствующая инфекция, тогда как совокупность лабораторных и эпизоотологических данных свидетельствовала в пользу неоспороза как основной причины абортов. Этот пример показывает, что при диагностике абортов важно не только обнаружить возбудителя, но и правильно интерпретировать результаты исследований с учётом анамнеза и условий содержания животных.
Профилактика абортов
Профилактика абортов всегда выгоднее, чем бороться с их последствиями. Правильные меры позволяют существенно снизить потери и сэкономить немалые средства.
Для удобства мы собрали все ключевые рекомендации в один практический чек-лист.
Заключение
Аборты у КРС — это, как правило, многофакторная проблема, возникающая под влиянием инфекционных, алиментарных и управленческих факторов. Кроме того, аборт у коровы — это не только потеря телёнка. Аборты, особенно происходящие на поздних сроках стельности, приводят к значительным экономическим потерям вследствие снижения молочной продуктивности, увеличения межотельного интервала и дополнительных затрат на ремонт стада.
Если уровень абортов в хозяйстве превышает ожидаемые значения (обычно 3–5% в год), важно не ограничиваться регистрацией случаев, а проводить полноценный анализ аборт с обязательным лабораторным исследованием плода, оценкой кормления и условий содержания.
Практика показывает, что именно комплексный подход (своевременная ветеринарная диагностика, контроль кормления, мониторинг воспроизводства) позволяет существенно снизить репродуктивные потери и повысить экономическую эффективность хозяйства.
Для разработки индивидуального плана диагностики и профилактики абортов, вы можете обратиться к нашим ветеринарным консультантам:
1. Bettis A.A., et al. A systematic review on leptospirosis in cattle: A European perspective. One Health. 2023;17:100608.
2. Chiminelli I., Spicer L.J., Maylem E.R.S., Caloni F. Emerging mycotoxins and reproductive effects in animals: A short review. Journal of Applied Toxicology. 2022;42(12):1901–1909.
3. Cole J.B., et al. Genomic effects on fertility traits in dairy cattle. Journal of Dairy Science. 2021.
4. Dovolou E., et al. Heat stress effects on dairy cattle fertility and reproduction. Animals. 2023.
5. Falconer D.S., Mackay T.F.C. Introduction to Quantitative Genetics. 4th ed. Harlow: Pearson Education, 1996.
6. Fricke P.M., Wiltbank M.C. Twin pregnancy and reproductive performance in dairy cattle: a review. Journal of Dairy Science. 2019.
7. Grandin T. Improving Animal Welfare: A Practical Approach. 3rd ed. Wallingford: CABI Publishing, 2020.
8. Grégoire F., et al. Laboratory Diagnosis of Bovine Abortions Caused by Non-Maintenance Pathogenic Leptospira spp. Pathogens. 2020;9(6):413.
9. Hansen P.J. Reproductive physiology of the heat-stressed dairy cow: implications for fertility. Animal Reproduction. 2019.
10. Hecker Y.P., González-Ortega S., Cano S., Ortega-Mora L.M., Horcajo P. Bovine infectious abortion: a systematic review and meta-analysis. Frontiers in Veterinary Science. 2023;10:1249410.
11. Mee J.F. Review: Bovine foetal mortality – risk factors, causes, immune responses and immuno-prophylaxis. Animal. 2023.
12. Nayeri T., et al. Neospora caninum infection in aborting bovines and lost fetuses: a systematic review and meta-analysis. PLOS One. 2022.
13. Ogunade I.M., et al. Silage review: Foodborne pathogens in silage and their mitigation by silage additives. Journal of Dairy Science. 2018;101(5):4132–4142.
14. Radostits O.M., Gay C.C., Hinchcliff K.W., Constable P.D. Veterinary Medicine: A Textbook of the Diseases of Cattle, Horses, Sheep, Pigs and Goats. 11th ed. Elsevier, 2017.
15. WOAH (World Organisation for Animal Health). Infectious bovine rhinotracheitis / infectious pustular vulvovaginitis.